转染试剂用量:转染试剂的用量是影响转染效率的重要因素之一。过多或过少的转染试剂都可能导致转染效率降低。在阳离子脂质体Lipofectamine2000对PC12细胞的转染实验中,发现lipo2000用量为5μL,DNA2μg,转染时间为6h时,PC12细胞转染率高达40%,且未影响细胞的正常分泌3。在脂质体介导法转染肿瘤细胞效率的优化实验中,研究了细胞接种密度、DNA用量、脂质体与DNA的比例等因素对脂质体转染效率的影响。结果表明,2-5次细胞传代,2×105接种密度、4μgDNA用量、2.5:1的脂质体与DNA比例、30min脂质体-DNA复合物形成时间以及6h细胞与复合物孵育时间,转染效率比较高9PLL(聚L -赖氨酸)是生理条件下带正电的多氨基酸,当链长超过20个残基时,它与质粒DNA结合并凝聚成致密颗粒。江苏难转细胞转染试剂
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脂质体组成:脂质体的组成对转染效率有重要影响。不同的脂质体可能具有不同的电荷性质、大小和稳定性,这些因素都会影响脂质体与细胞的相互作用。阳离子脂质体通常具有较高的转染效率,因为它们可以与带负电荷的DNA结合,并通过静电作用与细胞表面结合。例如,Lipofectamine2000和Lipofectamine3000都是常用的阳离子脂质体,它们在不同类型的细胞中都表现出较高的转染效率11316。脂质体的组成还可能影响其在细胞内的释放和稳定性。一些脂质体可能更容易被细胞内的酶降解,从而降低转染效率。山东转染试剂RNA 转染试剂是一类能够将 RNA 分子导入细胞内的物质作用原理。
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在核酸递送中的应用核酸***可以通过基因增强、基因抑制和基因组编辑实现持久甚至***的效果。然而,裸核酸分子难以进入细胞,阳离子聚合物作为非病毒核酸递送系统,其分子上带有正电荷基团,可浓缩核酸分子形成纳米颗粒,帮助核酸跨越屏障在细胞中表达蛋白质或抑制目标基因表达。阳离子聚合物易于合成、修饰和结构控制,是一类有前途的核酸递送系统7。在颅内递送合成mRNA中的应用在本研究中,使用常用的转染试剂建立了颅内递送合成mRNA的小鼠模型。将合成的荧光素酶mRNAs用两种不同的转染试剂包裹后定点微注射到大脑中,通过小动物成像系统监测递送的mRNA的表达状态,并通过行为和血液生化测量评估可能的试剂诱导的生物毒性。该模型表明,合成mRNA可以用常用的转染试剂成功递送到大脑中,且没有可测量的毒性,外源性mRNA的表达在颅内注射后在合理的时间内持续存在。合成修饰的TRAILmRNA也被用作***应用的例子9。
联合使用其他技术优化DNA和RNA转移的转染试剂在肌肉细胞中的应用:在C2C12细胞中,比较了五种商业转染试剂(Lipofectamine®3000、Viafect™、Fugene®HD、C2C12CellAvalanche®和JetOPTIMUS®)的转染效率7。通过优化DNA:转染剂比例和细胞密度,所有试剂都达到了超过60%的转染效率,且对细胞生长和活力的影响有限。然而,在C2C12细胞中优化的用于DNA转移的条件下,这些试剂对siRNA的转移效率较低,并且对原代肌肉细胞的毒性较高。这提示在使用转染试剂时,可以通过联合使用其他技术或优化转染条件,以提高转染效率并降低细胞死亡。例如,可以进一步研究不同试剂之间的联合使用,或者优化转染后的培养条件,以降低细胞毒性。综上所述,在不同细胞模型中提高RNA转染试剂的转染效率同时降低细胞死亡,可以通过选择合适的转染试剂、优化转染条件以及联合使用其他技术等方法来实现。未来的研究可以进一步深入探讨不同细胞模型中比较好的转染策略,以满足不同研究领域的需求。PEI的分子量对细胞毒性和基因转移活性有影响。
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对细胞周期的影响:在微小RNA-1180转染肾*细胞的实验中,FCM结果显示,转染miR-1180后,位于G0/G1期的细胞比例明显增大,而位于S期和G2/M期的细胞比例明显下降,表明细胞周期被阻滞在G0/G1期1。对转染效率的影响:在脂质体介导RNA干扰质粒转染鸡成骨细胞条件的优化实验中,对转染前细胞融合度、质粒质量与脂质体体积比及转染时间进行优化,在荧光倒置显微镜下观察并计算转染效率。结果表明,在转染前细胞融合达到90%以上,质粒DNA与脂质体比例为1:2.5时转染效率比较高,并且在转染后48h转染效果比较好3。在筛选更优的脂质体转染试剂的实验中,分别用RNAiMax及MessageMax将modGFP转染入MEF细胞,流式分析发现MessageMax的转染效率为(83.33%±3.23%),略高于RNAiMax的(78.77%±6.12%),两者没有统计学差异,但是流式分析和荧光显微镜观察均表明MessageMax转染后1周内的蛋白翻译表达效率更高,是更高效的modRNA转染试剂8。
RNA 转染试剂的效果受到多种因素的影响,包括细胞类型、转染试剂种类、转染条件等。在实际应用中,需要根据具体的实验需求选择合适的转染试剂和优化转染条件,以提高转染效率并减少对细胞的毒性作用。 选择合适的转染试剂可能取决于几个因素,包括转染核酸的类型和转染的复杂性(单转染或共转染)。安徽转染试剂指导
肌内注射脂质体不能引起强烈的毒性反应,这与肺内或静脉注射途径的情况不同。江苏难转细胞转染试剂
优化电转方法筛选**适电压和脉冲时间:不同细胞种类电转所需的**适电压和脉冲时间不同。例如,人成纤维细胞电转modRNA的**适电压为440V,**适脉冲时间为30ms;Hela、293T、3T3细胞电转**适电压分别为425V、400V、440V,**适脉冲时间均为30ms;人/兔外周血来源的悬浮的单个核细胞的**适电压分别为840V和860V,**适脉冲时间均为20ms。通过筛选**适电压和脉冲时间,可以提高RNA转染效率,同时证明了电转法转染modRNA进入细胞的可行性,且可同时将两种modRNA导入同一个细胞内6。RNA电穿孔高效转染原代淋巴细胞:使用体外转录的mRNA通过电穿孔可以实现高基因转染效率和低转染相关毒性。例如,在用GFP或mCD62L转染的受激原代人和鼠T淋巴细胞中观察到90%以上的转基因表达和80%以上的活细胞。GFPRNA对未刺激的人PBMC或鼠脾细胞进行电穿孔,分别产生95%和56%的GFP⁺细胞。此外,基因表达迅速且持久,对经过RNA电穿孔的T淋巴细胞未观察到不良影响7。江苏难转细胞转染试剂
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